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Institut de
Recherche sur la
Biologie de l'
Insecte
 
 
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Chercheurs

Charlotte
LECUREUIL
Maître de Conférences
Equipe : Neuro-Ethologie
Tél : 02 47 302 47 36 70 87

Compétences techniques :

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Thématique de recherche :

Mots-clés : physiologie de la reproduction, écophysiologie, fonctions males, fertilité, perturbateur endocrinien, testicule, parasitoïdes, mécanismes d'action

 

Projet de recherche : REGULATIONS DES FONCTIONS TESTICULAIRES

Après avoir travaillé plusieurs années sur la régulation des fonctions testiculaires chez les mammifères (souris et homme), je m’intéresse maintenant à comprendre au niveau du testicule comment la spermatogenèse ou ses régulations peuvent être perturbées chez les insectes.

En effet, depuis quelques années, on observe une inquiétante augmentation des troubles de la reproduction chez les males. En plus de concerner la santé humaine, avec un nombre croissant d’hommes présentant une altération de la spermatogenèse, ce problème peut également avoir des conséquences drastiques sur la production de denrées alimentaires. En effet, la réduction des capacités reproductives d’espèces d’intérêt agronomique, tels que les pollinisateurs et les ennemis naturels des ravageurs de plantes, risquent de considérablement freiner la production de fruits et légumes. Les causes de ces dérèglements de la spermatogénèse sont multifactorielles : l’augmentation de l’exposition des animaux aux xénobiotiques d’origine humaine et à des températures élevées liées aux changements climatiques sont certainement des facteurs d’importance. Bien que les invertébrés représentent environ 95% des animaux, peu d’études ont porté sur les effets de leur exposition à des produits chimiques risquant de perturber leur système endocrinien (e.g. phtalates), et à des stress thermiques sur leurs capacités reproductives. Par ailleurs, les mécanismes sous-jacents conduisant à une réduction de la spermatogénèse restent à ce jour relativement méconnus. Différents stress biotiques et abiotiques appliqués à des hyménoptères parasitoïdes induisent une hypofertilité male. Ces hyménoptères parasitoïdes apparaissent comme d’excellents modèles pour analyser les effets de l’environnement sur les fonctions de reproduction des mâles. En effet, ils sont faciles à élever en laboratoire et à utiliser en agronomie dans le contrôle des populations d’insectes ravageurs de cultures ou de récoltes. C’est le cas de Nasonia vitripennis qui présente également d’autres avantages : son génome complètement séquencé est désormais disponible et il est possible d’utiliser la technique des ARNi. De plus, le développement rapide des individus de cette espèce offre l’opportunité de tester les conséquences de stress environnementaux sur la fertilité des mâles et les conséquences sur la génération suivante de façon simple, rapide et peu couteuse.

L’objectif principal du projet "Fertiliwasp" financé par l'ANR 2014-2016 est donc d’identifier les mécanismes responsables de la diminution de la fertilité observée chez les mâles après une exposition à des perturbations chimiques et thermiques, appliquées de façon séparée ou en association. Nous nous proposons d’analyser les effets du di(2-ethylhexyl) phthalate (DEHP) et des ecdystéroïdes, comme stress chimique. Le stress thermique sera, quant à lui, évalué en soumettant les individus à des températures sub-léthales. Par ailleurs, une approche d’écotoxicogénomique sera développée afin d’identifier les réseaux de gènes contrôlant les fonctions testiculaires et sensibles aux stress. Ceci permettra la découverte de gènes candidats qui seront étudiés plus en détail.

Notre ambition à long terme est de proposer N. vitripennis comme un modèle de prédiction pour tester les effets potentiels de différents types de perturbations exogènes sur les hyménoptères et un modèle comparatif pour étudier la régulation de la spermatogenèse chez les autres espèces.

Publications majeures :

N’Tumba-Byn T, Moison D, Lacroix M, Lécureuil C, Lesage L, Prud’homme S, Pozzi-Gaudin S, Frydman R, Benachi A, Livera G, Rouiller-Fabre* V, Habert* R. 2012 Differential Effects of bisphenol A and diethylstilbestrol on human, rat and mouse fetal Leydig cell function, Plos One, 7(12):e48266        *These authors contributed equally to this work

 

Muczynski V, Lécureuil C, Messiaen S, Guerquin MJ, N’tumba-Byn T, Moison D, Hodroj W, Benjelloun H, Baijer J, Livera G, Frydman R, Benachi A, Habert R, Rouiller-Fabre V. 2012 Cellular and molecular effect of MEHP involving LXRα in human fetal testis and ovary. Plos One, 7(10):e48266

 

Suire, S., Lécureuil, C., Anderson, K., Damoulakis, G., Niewczas, I., Davidson, K., Guillou, H., Pan, I., Wu, D., Clark, J., Hawkins*, P., Stephens*, L. 2012 GPCR activation of Ras and PI3Kg in neutrophils depends on PLCb2/b3 and the RasGEF RasGRP4. EMBO Journal, 31:3118-3129       *These authors contributed equally to this work

 

Tartarin*, P., Moison*, D., Guibert, E., Dupont, J., Habert, R., Rouiller-Fabre, V., Frydman, N., Pozzi, S., Frydman, R., Lécureuil*, C, Froment*, P. 2012 Possible consequences of metformin treatment on testis development in human and murine foetus. Human reproduction, 27:3304-3314       *These authors contributed equally to this work

 

Lambrot, R.*, Muczynski, V.*, Lécureuil, C., Angenard, G., Coffigny, H., Pairault, C., Moison, D., Frydman, R., Habert, R. & Rouiller-Fabre, V. 2009 Phthalates impair germ cell development in the human fetal testis in vitro without change in testosterone production. Environ Health Perspect 117, 32-7.       *These authors contributed equally to this work

 

Lécureuil, C., Staub, C., Fouchecourt, S., Maurel, M. C., Fontaine, I., Martinat, N., Gauthier, C., Daudignon, A., Delaleu, B., Sow, A., Jegou, B. & Guillou, F. 2007 Transferrin overexpression alters testicular function in aged mice. Mol Reprod Dev 74, 197-206.

 

Guillou, H., Lécureuil, C., Anderson, K. E., Suire, S., Ferguson, G. J., Ellson, C. D., Gray, A., Divecha, N., Hawkins, P. T. & Stephens, L. R. 2007 Use of the GRP1 PH domain as a tool to measure the relative levels of PtdIns(3,4,5)P3 through a protein-lipid overlay approach. J Lipid Res 48, 726-32.

 

Lécureuil, C., Tesseraud, S., Kara, E., Martinat, N., Sow, A., Fontaine, I., Gauthier, C., Reiter, E., Guillou, F. & Crepieux, P. 2005 Follicle-stimulating hormone activates p70 ribosomal protein S6 kinase by protein kinase A-mediated dephosphorylation of Thr 421/Ser 424 in primary Sertoli cells. Mol Endocrinol 19, 1812-20.

 

Lécureuil, C., Saleh, M. C., Fontaine, I., Baron, B., Zakin, M. M. & Guillou, F. 2004 Transgenic mice as a model to study the regulation of human transferrin expression in Sertoli cells. Hum Reprod 19, 1300-7.

 

Lécureuil, C., Fontaine, I., Crepieux, P. & Guillou, F. 2002 Sertoli and granulosa cell-specific Cre recombinase activity in transgenic mice. Genesis 33, 114-8.

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